ОХНМЖурнал неорганической химии Russian Journal of Inorganic Chemistry

  • ISSN (Print) 0044-457X
  • ISSN (Online) 3034-560X

СИНТЕЗ КОМПЛЕКСОВ НИКЕЛЯ(II) НА ОСНОВЕ ДИАЛКИЛФОСФОРИЛПИРИДИНОВ И ИХ ЦИТОТОКСИЧЕСКАЯ АКТИВНОСТЬ

Код статьи
10.31857/S0044457X23600822-1
DOI
10.31857/S0044457X23600822
Тип публикации
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том 68 / Номер выпуска 9
Страницы
1137-1145
Аннотация
На основе 1,4-N,O-лигандов L2–L4 с фосфорильными группами ациклического и циклического строения получен бис-хелатный комплекс никеля(II) состава [L2Ni(H2O)2](BF4)2 (4), где L = 1,3-дибензгидрил-5-(пиридин-2-ил)-5-оксo-1,3,5-диазафосфоринан, и трис-хелатные комплексы 5 и 6 состава [L3Ni](BF4)2, где L = 2-диэтилфосфорилпиридин и 2-диизопропилфосфорилпиридин. Структура и состав комплексов 4–6 подтверждены методами масс-спектрометрии и ИК-спектроскопии, термогравиметрического и элементного анализа. Структура комплексов 4-EtOH и 5 в кристаллах установлена с помощью рентгеноструктурного анализа. Для полученных ранее комплексов никеля(II) 1–3 на основе 2-(oксофосфолан)пиридинов и синтезированных в данной работе комплексов никеля(II) изучены цитотоксические свойства по отношению к раковым клеткам M-HeLa, HuTu80 и нормальным клеточным линиям Chang Liver. Установлено, что комплексы с лигандами, содержащими циклические фосфорильные группы, обладают большей цитотоксичностью по отношению к раковым клеткам по сравнению с комплексами с их ациклическими аналогами.
Ключевые слова
третичные фосфиноксиды циклические фосфиноксиды N,O-лиганды пиридин Ni<sup>II</sup> цитотоксичность рентгеноструктурный анализ
Дата публикации
01.09.2023
Год выхода
2023
Всего подписок
0
Всего просмотров
35

Библиография

  1. 1. Mobley H.L., Hausinger R.P. // Microbiol. Rev. 1989. V. 53. № 1. P. 85. https://doi.org/10.1128/mr.53.1.85-108.1989
  2. 2. Huang W.-S., Liu S., Zou D. et al. // J. Med. Chem. 2016. V. 59. № 10. P. 4948. https://doi.org/10.1021/acs.jmedchem.6b00306
  3. 3. Finkbeiner P.P., Hehn J., Gnamm C. // J. Med. Chem. 2020. V. 63. P. 7081. https://doi.org/10.1021/acs.jmedchem.0c00407
  4. 4. Тригулова К.Р., Шамсиева А.В., Файзуллин Р.Р. и др. // Коорд. химия. 2020. Т. 46. № 9. С. 522. Trigulova K.R., Shamsieva A.V., Fayzullin R.R. et al. // Russ. J. Coord. Chem. 2020. V. 46. № 9. P. 600. https://doi.org/10.1134/S1070328420090055
  5. 5. Chellan P., Nasser S., Vivas L. et al. // J. Organomet. Chem. 2010. V. 695. № 19–20. P. 2225. https://doi.org/10.1016/j.jorganchem.2010.06
  6. 6. Lee S.-Y., Hille A., Frias C. et al. // J. Med. Chem. 2010. V. 53. № 16. P. 6064. https://doi.org/10.1021/jm100459k
  7. 7. Pradeepa S.M., Bhojya Naik H.S., Vinay Kumar B. et al. // Spectrochim. Acta, Part A: Mol. Biomol. Spectrosc. 2013. V. 101. P. 132. https://doi.org/10.1016/j.saa.2012.09.062
  8. 8. Sathisha M.P., Shetti U.N., Revankar V.K. et al. // Eur. J. Med. Chem. 2008. V. 43. № 11. P. 2338. https://doi.org/10.1016/j.ejmech.2007.10.003
  9. 9. Datta S., Seth D.K., Gangopadhyay S. et al. // Inorg. Chim. Acta. 2012. V. 392. P. 118. https://doi.org/10.1016/j.ica.2012.05.034
  10. 10. Savir S., Wei Z.J., Kent Liew J.W. et al. // J. Mol. Struct. 2020. P. 128090. https://doi.org/10.1016/j.molstruc.2020.12809
  11. 11. Li P., Niu M., Hong M. et al. // J. Inorg. Biochem. 2014. V. 137. P. 101. https://doi.org/10.1016/j.jinorgbio.2014.04.0
  12. 12. Sousa L.M., Souza W.A., Paixao D.A. et al. // Inorg. Chim. Acta. 2020. V. 511. P. 119824. https://doi.org/10.1016/j.ica.2020.119824
  13. 13. Шамсиева А.В., Тригулова К.Р., Файзуллин Р.Р. и др. // Изв. АН. Сер. хим. 2018. Т. 67. № 7. С. 1206. Shamsieva A.V., Trigulova K.R., Fayzullin R.R. et al. // Russ. Chem. Bull. (Int. Ed.) 2018. V. 67. № 7. Р. 1206. https://doi.org/10.1007/s11172-018-2203-7
  14. 14. Тригулова К.Р., Шамсиева А.В., Касимов А.И. и др. // Изв. АН. Сер. хим. 2022. № 7. С. 1410. Trigulova K.R., Shamsieva A. V., Kasimov A.I. et al. // Russ. Chem. Bull. 2022. V. 71. № 7. P. 1410. https://doi.org/10.1007/s11172-022-3547-6
  15. 15. Enikeeva K.R., Shamsieva A.V., Kasimov A.I. et al. // Inorg. Chim. Acta. 2023. V. 545. P. 121286. https://doi.org/10.1016/j.ica.2022.121286
  16. 16. APEX2 (Version 2.1), SAINTPlus. Data Reduction and Correction Program Version 7.31A, Bruker Advansed X-ray Solutions, Bruker AXS Inc., Madison, Wisconsin, USA, 2006.
  17. 17. Sheldrik G.M. SADABS, Program for empirical X-ray absorption correction, Bruker-Nonis, 1990–2004.
  18. 18. Sheldrick G.M. // Acta Crystallogr., Sect. A. 2015. V. 71. P. 3.
  19. 19. Sheldrick G.M. // Acta Crystallogr., Sect. C. 2015. V. 71. P. 3.
  20. 20. Spek A.L. // Acta Crystallogr., Sect. D. 2009. V. 65. P. 148.
  21. 21. Farrugia L.J., Win J. // J. Appl. Crystallogr. 2012. V. 45. P. 849.
  22. 22. Macrae C.F., Sovago I. et al. // J. Appl. Crystallogr. 2020. V. 53. P. 226. https://doi.org/10.1107/S1600576719014092
  23. 23. Zhang S., Pattacini R., Jiea S. et al. // Dalton Trans. 2012. V. 41. P. 379. https://doi.org/10.1039/c1dt11352f
  24. 24. Li Z., Sun W.-H., Wang L. et al. // J. Chem. Crystallogr. 2002. V. 32. P. 107. https://doi.org/10.1023/A:1015673100877
  25. 25. Dodoff N., Maccek J., Angelova O. et al. // J. Coord. Chem. 2015. V. 22. P. 219. https://doi.org/10.1080/00958979009408218
  26. 26. Montagner D., Fresch B., Browne K. et al. // Chem. Commun. 2017. V. 53. № 1. P. 134. https://doi.org/10.1039/C6CC08100B
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека