Везде

ОХНМЖурнал неорганической химии Russian Journal of Inorganic Chemistry

  • ISSN (Print) 0044-457X
  • ISSN (Online) 3034-560X

АНАЛИЗ АНИОНА -ДЕКАБОРАТА И ЕГО ПРОИЗВОДНЫХ МЕТОДОМ КАПИЛЛЯРНОГО ЗОННОГО ЭЛЕКТРОФОРЕЗА

Вы можете
Код статьи
S3034560X25090063-1
DOI
10.7868/S3034560X25090063
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Калистратова А.В.
  • Аффилиация: Российский химико-технологический университет им. Д.И. Менделеева
Новикова Д.В.
  • Аффилиация: Российский химико-технологический университет им. Д.И. Менделеева
Кубасов А.С.
  • Аффилиация: Институт общей и неорганической химии им. Н.С. Курнакова РАН
Жижин К.Ю.
  • Аффилиация: Институт общей и неорганической химии им. Н.С. Курнакова РАН
Кузнецов Н.Т.
  • Аффилиация: Институт общей и неорганической химии им. Н.С. Курнакова РАН
Том/ Выпуск
Том 70 / Номер выпуска 9
Страницы
1148-1156
Аннотация
Кластерные соединения бора представляют собой неорганические полиэдрические структуры, используемые в различных областях. Они обладают широким спектром биологической активности и являются перспективными соединениями для бор-нейтронозахватной терапии рака, поэтому для них требуется разработка различных аналитических методик качественного и количественного анализа и определения их свойств. Капиллярный электрофорез (КЭ) является интересным универсальным методом анализа заряженных веществ. Однако имеется довольно ограниченное количество исследований кластерных соединений бора с использованием КЭ. В данной работе сообщается о возможности технически простого метода капиллярного зонного электрофореза аниона -декабората [BH] и некоторых его производных, а также [BH]. Показана возможность анализа анионов как при прямой, так и при обратной полярности в отсутствие модификаторов внутренней поверхности капилляра или покрытия стенок полимером. Определена электрофоретическая подвижность анализируемых соединений. Представленная работа является наглядным примером того, что капиллярный электрофорез может служить простым и удобным методом анализа растворимых и частично водорастворимых кластерных соединений бора.
Ключевые слова
бораты кластерные соединения электрофорез электрофоретическая подвижность обратная полярность
Дата публикации
01.09.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
32

Библиография

  1. 1. Mahfouz N., Ghaida F.A., El Hajj Z. et al. // Chemistryselect. 2022. V. 7. № 21. P. e202200770. https://doi.org/10.1002/slct.202200770
  2. 2. Zhao X., Yang Z., Chen H. et al. // Coord. Chem. Rev. 2021. V. 444. P. 214042. https://doi.org/10.1016/j.ccr.2021.214042
  3. 3. Mukherjee S., Thilagar P. // Chem. Commun. 2016. V. 52. № 6. P. 1070. https://doi.org/10.1039/c5cc08213g
  4. 4. Guo L., Yu X., Tu D. et al. // Chem. A Eur. J. 2022. V. 28. № 33. P. e202200303. https://doi.org/10.1002/chem.202200303
  5. 5. Nikiforova S.E., Khan N.A., Kubasov A.S. et al. // Crystals. 2023. V. 13. № 10. P. 1449. https://doi.org/10.3390/cryst13101449
  6. 6. Korolenko S.E., Zhuravlev K.P., Tsaryuk V.I. et al. // J. Lumin. 2021. V. 237. P. 118156. https://doi.org/10.1016/j.jlumin.2021.118156
  7. 7. Tong D., Wang H., Chen L. et al. // High Perform. Polym. 2019. V. 31. № 6. P. 694. https://doi.org/10.1177/0954008318788389
  8. 8. Yue J., Li Y., Li H. et al. // Rsc. Adv. 2015. V. 5. № 119. P. 98010. https://doi.org/10.1039/c5ra15743a
  9. 9. Turyshev E.S., Kopytin A.V., Zhizhin K.Y. et al. // Talanta. 2022. V. 241. P. 123239. https://doi.org/10.1016/j.talanta.2022.123239
  10. 10. Kopytin A.V., Turyshev E.S., Kubasov A.S. et al. // Russ. J. Inorg. Chem. 2023. V. 68. № 1. P. 6. https://doi.org/10.1134/S0036023622700103
  11. 11. Jacob L., Rzeszotarska E., Kaszyński P. et al. // Eur. J. Inorg. Chem. 2020. V. 2020. № 32. P. 3083. https://doi.org/10.1002/ejic.202000456
  12. 12. Leśnikowski Z.J. // Expert Opin. Drug Discov. 2016. V. 11. № 6. P. 569. https://doi.org/10.1080/17460441.2016.1174687
  13. 13. Avdeeva V.V., Malinina E.A., Zhizhin K.Y. et al. // Russ. J. Inorg. Chem. 2022. V. 67. № 1. P. 28. https://doi.org/10.1134/S0036023622010028
  14. 14. Das B.C., Nandwana N.K., Das S. et al. // Molecules. 2022. V. 27. № 9. P. 2615. https://doi.org/10.3390/molecules27092615
  15. 15. Messner K., Vuong B., Tranmer G.K. // Pharmaceuticals. 2022. V. 15. № 3. P. 263. https://doi.org/10.3390/ph15030264
  16. 16. Fink K., Uchman M. // Coord. Chem. Rev. 2021. V. 431. P. 213684. https://doi.org/10.1016/j.ccr.2020.213684
  17. 17. Bogucka-Kocka A., Kołodziej P., Makuch-Kocka A. et al. // Chem. Commun. 2022. V. 58. № 15. P. 2528. https://doi.org/10.1039/d1cc07075d
  18. 18. Wang S., Ren Y., Wang Z. et al. // Expert Opin. Drug Discov. 2022. V. 17. № 12. P. 1329. https://doi.org/10.1080/17460441.2023.2153829
  19. 19. Barba-Bon A., Salluce G., Lostalé-Seijo I. et al. // Nature. 2022. V. 603. № 7902. P. 637. https://doi.org/10.1038/s41586-022-04413-w
  20. 20. Hu X.-Y., Guo D.-S. // Angew. Chem. Int. Ed. 2022. V. 61. № 26. P. e202204979. https://doi.org/10.1002/anie.202204979
  21. 21. Lesnikowski Z.J. // Collect. Czechoslov. Chem. Commun. 2007. V. 72. № 12. P. 1646. https://doi.org/10.1135/cccc20071646
  22. 22. Purohit M., Kumar M. // Mater. Today Proc. 2022. https://doi.org/10.1016/j.matpr.2022.12.181
  23. 23. Mahmoud B.S., Alamri A.H., McConville C. // Cancers (Basel). 2020. V. 12. № 1. P. 175. https://doi.org/10.3390/cancers12010175
  24. 24. Fithroni A.B., Ohtsuki T., Matsuura E. et al. // Cells. 2022. V. 11. № 20. P. 3307. https://doi.org/10.3390/cells11203307
  25. 25. Kaniowski D., Suwara J., Ebenryter-Olbińska K. et al. // Int. J. Mol. Sci. 2022. V. 23. № 23. P. 14793. https://doi.org/10.3390/ijms232314793
  26. 26. Plesek J. // Chem. Rev. 1992. V. 92. № 2. P. 269. https://doi.org/10.1021/cr00010a005
  27. 27. Kumar R., Rathore A.S., Guttman A. // Electrophoresis. 2022. V. 43. № 1–2. P. 143. https://doi.org/10.1002/elps.202100182
  28. 28. Palmblad M., van Eck N.J., Bergquist J. // Trac Trends Anal. Chem. 2023. V. 159. P. 116899. https://doi.org/10.1016/j.trac.2022.116899
  29. 29. Ermolenko Y., Nazarova N., Belov A. et al. // J. Drug Deliv. Sci. Technol. 2022. V. 70. P. 103220. https://doi.org/10.1016/j.jddst.2022.103220
  30. 30. Wang M., Liu W., Tan S. et al. // J. Sep. Sci. 2022. V. 45. № 11. P. 1918. https://doi.org/10.1002/jssc.202100727
  31. 31. Van Schepdael A. // Trac Trends Anal. Chem. 2023. V. 160. P. 116992. https://doi.org/10.1016/j.trac.2023.116992
  32. 32. Kostal V., Arriaga E.A. // Electrophoresis. 2008. V. 29. № 12. P. 2578. https://doi.org/10.1002/elps.200700917
  33. 33. Ibáñez C., Acunha T., Valdés A. et al. Capillary electrophoresis in food and foodomics / Springer, 2016. https://doi.org/10.1007/978-1-4939-6403-1_22
  34. 34. Dong Y. // Trends Food Sci. Technol. 1999. V. 10. № 3. P. 87. https://doi.org/10.1016/S0924-2244 (99)00031-X
  35. 35. Parvez H., Caudy P., Parvez S. et al. Capill. Electroph. Biotech. Environ. Anal. / CRC Press, London, 2023. https://doi.org/10.1201/9780429070280
  36. 36. Riu J., Barceló D. // Tech. Inst. Anal. Chem. 2000. V. 21. P. 739. https://doi.org/10.1016/S0167-9244 (00)80023-2
  37. 37. Slavíček V., Grüner B., Vespalec R. // J. Chromatogr. A. 2003. V. 984. № 1. P. 121. https://doi.org/10.1016/S0021-9673 (02)01816-2
  38. 38. Teixidor F., Laromaine A., Viñas C. et al. // Dalton Trans. 2008. № 3. P. 345. https://doi.org/10.1039/b715362g
  39. 39. Vítová L., Fojt L., Vespalec R. // J. Chromatogr. A. 2014. V. 1338. P. 174. https://doi.org/10.1016/j.chroma.2014.02.060
  40. 40. Horáková H., Vespalec R. // Electrophoresis. 2007. V. 28. № 20. P. 3639. https://doi.org/10.1002/elps.200600814
  41. 41. Valeri A.L., Kremser L., Kenndler E. et al. // Electrophoresis. 2008. V. 29. № 8. P. 1658. https://doi.org/10.1002/elps.200700815
  42. 42. Williams B.A., Vigh G. // Anal. Chem. 1996. V. 68. № 7. P. 1174. https://doi.org/10.1021/ac950968r
  43. 43. Holub J., El Anwar S., Grüner B. et al. // Eur. J. Inorg. Chem. 2017. V. 2017. № 38. P. 4499. https://doi.org/10.1002/ejic.201700651
  44. 44. El Anwar S., Holub J., Tok O. et al. // J. Organomet. Chem. 2018. V. 865. P. 189. https://doi.org/10.1016/j.jorganchem.2018.02.050
  45. 45. Kubasov A.S., Golubev A.V., Bykov A.Y. et al. // J. Mol. Struct. 2021. V. 1241. P. 130591. https://doi.org/10.1016/j.molstruc.2021.130591
  46. 46. Kubasov A.S., Turishev E.S., Polyakova I.N. et al. // J. Organomet. Chem. 2017. V. 828. P. 106. https://doi.org/10.1016/j.jorganchem.2016.11.035
  47. 47. Matveev E.Y., Levitskaya V.Y., Novikov S.S. et al. // Russ. J. Inorg. Chem. 2022. V. 67. № 12. P. 1928. https://doi.org/10.1134/S0036023622601532
  48. 48. Monti Hughes A., Hu N. // Cancers (Basel). 2023. V. 15. № 16. P. 1491. https://doi.org/10.3390/cancers15164091
  49. 49. Melanson J.E., Baryla N.E., Lucy C.A. // Trac Trends Anal. Chem. 2001. V. 20. № 6–7. P. 365. https://doi.org/10.1016/S0165-9936 (01)00067-X
  50. 50. Kaniansky D., Masár M., Marák J. et al. // J. Chromatogr. A. 1999. V. 834. № 1–2. P. 133. https://doi.org/10.1016/S0021-9673 (98)00789-4
  51. 51. Aupiais J. // J. Solution Chem. 2011. V. 40. № 9. P. 1629. https://doi.org/10.1007/s10953-011-9734-y
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека